心律失常与受体相关研究

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心律失常与受体相关研究

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心律失常与受体相关研究

　　　　　　受体研究已有40余年，由于心脏存在多种受体，各种受体有其自身的信号通路，且受体间又存在交叉作用(cross-talk)，故受体及其信号通路研究仍是心血管疾病领域的重要方向。　　心脏病变时，心内神经递质系统，尤其是肾上腺素能受体通路有不同程度的损害。心力衰竭时受体功能异常是致心律失常以及心功能损害的重要中介因素。受体通过调节各种离子通道(Na+、Ca2+、K+、Cl-通道)改变细胞内外离子浓度，影响细胞电活动，易致传导性改变或产生后除极而诱发各种心律失常。利用遗传性猝死狗模型证实了室性心律失常发生的机制为浦肯野纤维早期后除极诱发的触发活动［1］。　　现就目前涉及心律失常与受体、心律失常遗传基础及传导系统有关研究作一概述。　　一、β肾上腺素能受体　　1.β肾上腺素能受体(β受体)在传导系统的分布　窦房结、心房内、房室结、希氏束和心室内传导系统均有β1、β2受体分布。窦房结内β1、β2受体均高于周围心房肌，房室结内β2受体最高。希氏束β1受体最低，希氏束、房室间隔β2受体最低。另外传导系统各部位β1、β2受体密度不一致。窦房结与心房内均以β1受体为主，但窦房结中β2受体为心房的2.5倍，与窦房结特殊的生理功能相一致［2］。希氏束内β2受体比例最高，占(72±6)%，房室结为(51±3)%，房室间隔均为(36±1)%。心室肌与冠状动脉相比，其β受体与G蛋白耦联更牢固［3］，可能与心室肌以β1肾上腺素能受体为主而冠状动脉以β2受体为主的亚型分布差异有关。　　关于年龄对344只 Fisher大鼠β受体影响的研究发现，随年龄增长，房室结β受体密度下降，但受体亲合力及亚型比率不变；而在左右心室，β受体的密度和亚型比率均无改变［4］。心力衰竭患者有β1受体下调，这种现象在心力衰竭早期就出现，且与心力衰竭的严重程度呈正相关；β2受体数目不变但功能下降，可能与抑制性G蛋白(G-protein inhibit)功能增强有关。β1、β2受体数目及比例在扩张型心肌病(DCM)、缺血性心肌病(ICM)心脏传导系统中差别不明显［5］。在经手术去除交感和副交感神经的动物模型中发现，β受体呈持续性上调，而M受体却不受影响［6］。　　2.β肾上腺素能受体在心律失常中的意义　正常心肌细胞β受体激动不会产生异常电活动。当心脏病变，尤其在心力衰竭、心肌缺血、心肌梗塞时β受体通路受损，诱发心律失常［7］。急性心肌缺血时，缺血区域局部儿茶酚胺(CA)浓度较血浆CA浓度高数倍，刺激传入和传出性自主神经，使得功能性耦联的β受体数目以及α1肾上腺素能受体反应性增加。浦肯野纤维上β受体可调节其传导性，此由Na+通道激活介导。心力衰竭时β1受体下调而β2受体不变，提示β2受体可能在心力衰竭致心律失常中意义更大。众多临床研究发现并非所有的β受体阻滞剂对心肌梗塞后心律失常起相同的保护作用。非选择性β受体阻滞剂对交感神经末梢肾上腺素释放比选择性β受体阻滞剂有更好的阻断作用［8］。同时完全阻断β1和β2受体较选择性阻断β1受体有更好的抗心律失常作用。这说明β2受体在急性心肌梗塞诱发的严重室性心律失常中具重要意义。推测机制可能是β2受体激活L-型Ca2+通道，或由细胞膜上离子交换提高细胞内Ca2+浓度，造成膜电位波动，诱发室性心动过速(室速)或心室颤动(室颤)。以上作用非cAMP依赖，可能是G蛋白与离子通道直接作用的结果［9］。　　某些室上性心律失常的发生可能与冠状动脉上的β受体密切相关。如病态窦房结综合征，病理生理改变包括冠状动脉痉挛、冠状动脉微循环损伤和交感神经功能不全，这些很可能由于冠状动脉上β受体功能下降所致［10］。β受体通路可开放IKATP(ATP敏感性K+通道)，导致细胞膜过度极化，Ca2+内流增加，进一步刺激一氧化氮(NO)合成［11］，最终扩张冠状动脉。冠状动脉搭桥术后发生窦房结和房室结动脉阻塞的患者更易发生心房颤动(房颤)，这也可能与冠状动脉上交感神经系统β受体功能下降，造成冠状动脉功能不全有关［12］。　　3.β肾上腺素能受体与其它类型受体间的相互影响　β受体与腺苷功能密切相关。心肌缺血时局部去甲肾上腺素(NE)释放，促使腺苷合成；阻断β受体可减少心脏腺苷合成和释放。这可能因为受体阻断后，ATP消耗减少，高能磷酸化合物浓度升高［13］。过去普遍认为腺苷通过A1(腺苷受体-Ⅰ型)抑制腺苷酸环化酶，保护心室肌。但在长时间室颤时，外源性CA可降低除颤阈值(DFT)，同时由于缺氧造成的腺苷含量增加通过拮抗肾上腺素能通路而提高DFT，从而不利于室颤的治疗［14］。与年龄相关性β受体功能下降相似，随年龄增长A受体(腺苷受体)也下调，尤其是特异性A1受体介导的抑制性信号通路的功能也降低，作用环节可能在腺苷/受体或受体/G蛋白水平［15］。　　血管紧张素Ⅱ(angiotensin Ⅱ,A ng-II)作用于AT1(Ang-II受体-I型)受体，激活蛋白激酶C(PKc)，降低大鼠心脏β1受体的刺激作用。这种Ang-Ⅱ介导的PKc活化可能与弗波酯(phorbol ester)介导的PKc活化有所不同。在动静脉瘘动物模型中，假手术组以AT1亚型为主，而手术组以AT2亚型为主。应用β受体阻滞剂后，AT受体亚群分布部分逆转回至AT1。这一现象在说明AT2在容量负荷造成的心脏扩大中起一定作用的同时，也揭示了β受体与AT受体之间存在功能上的相互作用［16］。　　4.抗β肾上腺素能受体自身抗体在心律失常中的意义　交感神经在调节心脏自律性方面起重要作用。转基因小鼠心房过度表达β1肾上腺素能受体可致心率变异性(HRV)减少，心律失常发生率增加［17］。　　过去对于抗β肾上腺素能受体抗体(抗β抗体)的研究多集中在心肌病上，认为心肌病发病与自体免疫异常有关，血清中出现高滴度的抗β1抗体。晚近在研究各种原发性电活动异常患者时发现原发性室性心律失常血清抗β抗体阳性率52.3%(11/21)，显著高于正常对照组14.8%(15/101)。传导阻滞组35.7%(5/14)也明显高于正常对照组。但室性心律失常中具备两种β受体的抗体，而传导阻滞患者血清中只有抗β1抗体阳性的趋势。房性心律失常患者血清中抗β1、β2抗体无显著升高［18］。Paci用放射性配基结合抑制分析法检测扩张型心肌病(DCM)患者，结果发现在DCM患者中伴有复杂性室性心律失常(CVA)者，血清中抗β抗体阳性率30%，远高于不伴CVA者(5%)和正常人(0%)，从而推论DCM患者血清中β抗体的出现与CVA的发生密切相关而与心室功能不全程度无关。同时也提示了抗β抗体与室性心律失常的关系可能较其与心肌病本身更为相关更为直接［19］。　　β肾上腺素能受体自身抗体在正常人体内有低水平存在，起自体调节β受体的作用，但异常的自体免疫过程产生高滴度抗体将会导致一系列受体后跨膜信号传递过程的改变。关于抗β抗体在心律失常发病机制中的研究目前多局限于回顾性研究，进一步确定抗β抗体存在是心律失常发病的启动因素之一，还需做大量的前瞻性研究。另外高水平抗β抗体的存在也提示，在临床上是否可以采取清除血清抗体的方法，作为心律失常患者的辅助治疗手段。　　二、α肾上腺素能受体与心律失常　　人类心脏存在α肾上腺素能受体(α受体)家族，α1有A、B、C、D 4种亚型。目前已证实犬浦肯野纤维上存在α2受体［20］，但似乎人类心肌内没有α2受体。所以对α受体与心律失常相关研究集中于α1受体。　　α受体通路由磷脂酶C(PLC)激活分解磷酸肌醇二磷酸(PIP2)生成三磷酸肌醇(IP3)、二酰甘油(DAG)，最终调节Ca2+、Na+、K+浓度而产生细胞电活动的异常。这一过程是Ca2+依赖性的。在犬心肌梗塞后诱发室颤模型中，给予α受体阻滞剂可预防室颤发生。由此可见，α1受体特别是α1A亚型在严重心律失常中起重要作用［21］。刺激α1受体可加重离体大鼠心脏缺血再灌注心律失常，可能由于缺血时局部交感神末稍释放内源性CA，激活α1A受体，通过增加Na+-H+交换，造成细胞内Na+浓度升高，Ca2+超负荷，易发生后除极和触发活动所致［22］。另外细胞内高Ca2+可激活钙敏感性K+通道(IK Ca)，加重缺血时心律失常的发生。但也有人报道应用α1A阻滞剂却未能明显降低再灌注心律失常的发生［23］，如何解释这一矛盾，尚需进一步研究。α1受体可抑制IK、Ito，延长浦肯野纤维动作电位复极化时间，有利于早期后除极诱发室性心律失常。犬浦肯野纤维与心内膜肌纤维对CA反应性存在差异，来源于α1受体相对密度差异，并且由此产生两种组织连接处细胞电活动的不一致将有助于诱发心律失常［24］。　　近年来，人们对Cl电流给予了极大的重视。豚鼠心室肌细胞存在cAMP激活的Cl电流(ICl cAMP)，它可使膜除极化，缩短APD(动作电位时限)，导致心律失常，α受体激动剂可抑制这种β肾上腺素能受体激活的Cl电流［25］。但目前尚未发现人心肌细胞中存在Cl电流。　　三、传导系统分离技术研究　　传导系统分离技术的探索，将有助于了解传导系统各部分细胞的组织化学和电生理特性，为心律失常发病机制的研究提供了有力的手段。　　单个窦房结细胞的分离多取材于兔和豚鼠的心脏［26］。在离体心脏灌流、胶原酶酶解的基础上，剪下窦房结区域，继续酶解消化，最终分散成单个细胞。典型的窦房结细胞在显微镜下呈长梭形，长约50～80 μm，宽10～15 μm，横纹较淡，有一个明显的核居于胞浆中央区［27］。　　浦肯野纤维的分离有多种方法，例如在4℃ Kreb溶液中将离体心脏打开，从左室取一窄条附有浦肯野纤维的肌段(宽约2～3 mm，平均横切面积1.2 mm2)，将游离的纤维末梢继续灌注悬浮，最终得到单个浦肯野纤维细胞［28］。　　以上传统的细胞分离方法均较繁琐，且多用于膜片钳技术记录单个细胞离子流的变化，故应用受限。Song等［29］创立了一种改良技术，根据传导系统解剖学定位特点，沿心脏长轴分离出整个传导系统。此法具有操作简便，可观察到传导系统两个相邻部位之间的过渡组织，以及能与其他多种实验目的相配合的优点。　　四、心律失常的遗传学基础　　美国每年有350 000人死于心脏性猝死，然而至今遗传性心律失常的分子细胞学机制仍是个谜，部分研究已将某些心律失常相关基因在染色体上定位。　　长QT综合征(LQT)是一种遗传性疾病。近年来逐步认识到LQT起源于编码心肌细胞离子通道蛋白基因的突变。4个LQT基因已被证实，亦不排除其它基因位点的存在［30］。LQT3基因SCN5A位于3号染色体，编码心肌Na+通道，SCN5A通道基因突变引起通道功能增强(gain-of-channel function)。LQT2基因HERG编码Ik通道alpha亚单位，位于7号染色体。HERG钾通道基因突变可造成通道功能下降。11号染色体上KVLQT1编码蛋白质的生理特性尚不清楚，但从其互补DNA序列分析中提示这一蛋白质可能是一种新型K+通道［31］。LQT4基因位于4q25-7，部分患者伴有面肩胛肱部肌营养不良(facioscapulohumeral muscular dystrophy,FSHD),且FSHD基因位于4q35-ter，推测两者可能有一定关系。　　家族性DCM中有一种特殊类型——传导系统紊乱性扩张型心肌病(CDDC)，其家族成员在20～30岁之间表现出明显的心律失常和房室阻滞。对俄亥俄州(Ohio)一家族进行连锁分析，发现CDDC基因位于1号染色体中心区(1p1-1q1)。最初连接蛋白connexin40(缝隙连接的蛋白成份)基因被认为是CDDC的代表基因，但未得到进一步证实。最近Mark等［32］(1996)对一个瑞士-德国家族的连锁分析结果，将基因定位于3号染色体短臂上(3P22-P25)，具体代表基因产物不知。　　另外对家族性房颤的基因分析，也发现其与染色体上某一位点变异密切相关［33］。以上资料表明遗传在心律失常中占重要地位。大量人群调查，尤其是家族基因连锁分析，将有助于从基因水平揭示心律失常的发病机制。　　五、房颤的离子、受体研究　　房颤是最常见的慢性心律失常，西方60岁以上的人群有2%～4%的患者有房颤。房颤的电生理特点为有效不应期和动作电位时限缩短，不应期离散度增加，但对房颤发生的细胞学机制了解很少。目前研究多集中在房颤时离子电流的异常上。有关研究表明，慢性房颤患者心房动作电位时限和有效不应期的缩短是由于外向K+电流减弱所致，且与特异性心房K+电流密度的改变相关。Ikα亚单位蛋白有KV1.5和KV2.1两种类型，慢性房颤时KV2.1密度不变，而KV1.5明显减少，且与Ik密度下降相一致，说明KV1.5是人心房肌细胞中Ik的主要成份［34］。另外慢性房颤患者，Ik Ach(Ach激活的外向钾电流)、L-型Ca2+通道、ICa的mRNA显著下降，降低程度与房颤病程呈正相关。　　心房肌内M受体含量丰富，迷走神经兴奋后释放Ach作用于M受体，通过G蛋白激活的外向K+电流，可使细胞膜过度极化，动作电位时限缩短。由于迷走神经末梢在心房中的离散性分布，迷走兴奋时，Ik Ach的激化程度在空间上亦非均一，从而造成各部分电活动不一致，有效不应期离散度增加，易化折返形成，诱发房颤。β肾上腺素能受体通路对Ik Ach、L型Ca2+通道均有激活作用，故在房颤发生中可能有意义。在对多种离子通道调控的研究中发现一特殊现象，M2、β2肾上腺素能受体对离子通道均为正调节，但在房颤中这些离子通道密度显著减少，是否离子通道也与受体一样，对受体后径路的刺激产生下调反应还有待进一步探索。　　在对多种心律失常患者抗β抗体研究中，房性心律失常似与抗β抗体相关性不大，可能由于心房肌中M2受体在细胞自律性调控中占优势所致，故可考虑研究一下房性心律失常尤其房颤患者是否存在高水平的抗M2抗体。　　AT受体在房颤发病中意义不甚明了。已有研究发现慢性房颤患者ATI受体mRNA显著降低，可能与房颤后心房功能不全有关。但Ang Ⅱ也具有离子通道调节作用。如Ang-Ⅱ可激活心脏受体而影响Na+通道，增加细胞膜上Na+通道的开放概率、激活与失活速率。Ang-Ⅱ增强Ca2+通道作用是通过受体与通道的直接作用。以上均表明Ang-II可能会在心律失常发病中起一定作用，但AT受体究竟是否有影响，以及其作用环节仍值得探讨。　　作者单位： 210029 南京医科大学第一附属医院心内科参考文献　　［1］Gilmour RF,Moise NS.Triggered activity as a mechanism for inherited ventricular arrhythmias in german shepherd dogs.J Am Coll Cardiol,1996,27:1526-1533. 　　［2］张寄南，苏恩本.心力衰竭与心肌肾上腺素受体.基础医学与临床，1997，17：20-24. 　　［3］Cooke L,Muntz KH.Differences in beta adrenergic receptor agonist affinity between cardiac myocytes and coronary arterioles in canine heart.J Pharmacol Exp Ther,1994,269:351-357. 　　［4］Kusumoto FM,Lurie KG,Dutton J,et al.Effects of aging in AV nodal and ventricular betaadrenergic receptors in the fischer 344 rat.Am J Physiol,1994,266:H 1408-1415. 　　［5］Engelhardt S,Bohm M,Bardmann K,et al.Analysis of beta-adrenergic receptor mRNA levels in human ventricular biopsy specimens by quantitative polymerase chain reactions:progressive reduction of beta 1-adrenergic receptor mRNA in heart failure.J Am Coll Cardiol,1996,27:146-154. 　　［6］Valette H,Delduze P,Syrota A,et al.Canine myocardial beta-adrenergic,muscarinic receptor densities after denervation:a PET study.J Nucl Med,1995,36:140-146. 　　［7］Merlet P,Caussin C,Poiseau E,et al.In vivo assessment of neurotransmitter system in cardiovascular diseases,clinical issues.J Nucl Med,1996,40:108-120. 　　［8］Newton GE,Parker JD.Acute effects of β1-selective and nonselective β-adrenergic receptor blockade and cardiac sympathetic activity in congestive heart failure.Circulation,1996,94:353-358. 　　［9］orge E,Lourdes C,James H,et al.β2-adrenergic receptor antagonists protect against ventricular fibrillation.Circulation,1997,96:1914-1922. 　　［10］Matsumura K,Nakase E,Saito T,et al.Assessment of myocardial perfusion and cardiac sympathetic nerve dysfunction in patients with sick sinus syndrome evaluation of coronary hemodynamics and201　TlCl/123I-MIBG myocardial SPECT.Kaku Igaku,1994,31:1321-1328. 　　［11］Zhi M,Robert P,Michel L.β2-adrenergic dilation of resistance coronary vessels involves KATP channel and nitric oxide in conscious dogs.Circulation,1997,95:1568-1576. 　　［12］Kolvekar S,DSouza A,Akhatar P,et al.Role of atrial ischemia in development of atrial fibrillation following coronary artery bypass surgery.Eur J Cardiothorac Surg,1997,11:70-75. 　　［13］Gorman MW,He MX,Sparks HV.Adenosine formation during hypoxia in isolated hearts:effect of adrenergic blockade.J Mol Cell Cardiol,1994,26:1613-1623. 　　［14］Bruce B,Erica D.Metabolic determinants of defibrillation:role of adenosine. Circulation,1995,91:838-844. 　　［15］Gao E,Syder DL,Johnson MD,et al.The effect of age on adenosine Al receptor function in the rat heart.J Mol Cell Cardiol,1997,29:593-602. 　　［16］Poole TD,Holder MS,Gipson D.Cardiac angiotensin II receptor populations during aortocaval fistulae,A II and beta adrenergic receptor blockade.Bioch-em Biophys Res Commun,1994,203:1865-1874. 　　［17］Mansier P.Decreased heart rate variability in transgenic mice overexpressing atrial βl adrenoceptors.Am J Physiol,1996,271:H1465-1472. 　　［18］Pablo A,Rosenbaum CM,Elizari M,et al.High prevalence of antibodies angainst beta1-and beta2-adrenoceptors in patients with primary electrical cardiac abnormalities.J Am Coll Cardiol,1995,26:864-869. 　　［19］Paci A,Danilo N,Giuliano C,et al.Anti β-receptor antibodies in dilated cardiomyopathy:relationship with ventricular dysfunction and arrhythmias (abstract).Circulation,1993,88:I-460. 　　［20］Lee HC,Samson RA,Cai JJ.Alpha-adrenergic receptor binding in canine Purkinje fibers.FEBS Lett,1996,380:39-43. 　　［21］Billman GE.Effect of alpha1-adrenergic receptor antagonists on susceptibility to malignant arrhythmias:protection from ventricular fibrillation.J Cardiovasc Pharmacol,1994,24:394-402. 　　［22］Masahiro Y,Metin A.Exacerbation of reperfusion arrhythmias by αl-adrenergic stimulation:a potential role for receptor mediated activation of sarcolemmal sodium-hydrogen exchange.Cardiovasc Res,1995,29:222-230. 　　［23］Masahiro Y,Metin A.Effect of selective αlaadrenoceptor antagonists onreperfusion arrhythmias in isolated rat hearts.Mol Cell Biochem,1995,147:173-180. 　　［24］Turner LA,Vodanovic S,Bosnjak ZJ.Interaction of anesthetics and catecholamines on conduction in the canine His-Purkinje system.Adv Pharmacol,1994,31:167-184. 　　［25］Hoool LC,Oleksa LM,Harvey RD.Role of G proteins in alpha1-adrenergic inhibition of the beta adrenergically activated chloride current in cardiac myocytes.Mol Pharmacol,1997,51:853. 　　［26］Qi AD,Kwan YW.Modulation by extracellular ATP of L-type calcium channels in guinea pig single sinoatrial nodal cell.Br J Pharmacol,1996,119:1454-1462. 　　［27］Hiroyuki I,Kyoichi O,Akinori N.Background conductance attributable to spontaneous opening of muscarinic K+ channels in rabbit sino-atrial node cells.J Physiol,1994,476:55-68. 　　［28］David FS,Juraj S,Lawrence AT,et al.Differential effects of halothane and isoflurane on contractile force and calcium transients in cardiac purkinje fiber.Anesthesiology,1994,80:1360-1368. 　　［29］Song Y,Zhu J,Laaksonen H,et al.A modified method for examining the cardiac conduction system.Forensic Sci Int,1997,86:135-138. 　　［30］Keating MT.The long QT syndrome.A review of recent molecular genetic and physiologic discoveries.Medicine Baltimore,1996,75:1-5. 　　［31］Luisa M,Mauro G.Molecular genetics of dilated cardomyopathy.Current Opinion in Cardiology,1997,12:301-309. 　　［32］Mark T,Keating MT,Micheal C,et al.Molecular genetic insight into cardiovascular disease.Science,1996,272:681-685. 　　［33］Ramon B,Terry T,Grazyna Z,et al.Identification of a genetic locus for familial atrial fibrillation.N Engl J Med,1997,336:905-911. 　　［34］David R,Amber L,Patrick M,et al.Outward K+ current densities and Kvl.5 expression are reduced in chronic human atrial fibrillation.Circ Res,1997,80:772-781.